27.08.2019
Neues Verfahren zur ortsspezifischen Spinmarkierung
In Kombination mit Elektronenspinresonanz-Spektroskopie (ESR) gehört die ortsspezifische Spinmarkierung (Site-Directed Spin Labelling, SDSL) zu den etablierten und leistungsstarken Verfahren für die Aufklärung von Struktur, Funktion und Dynamik von Proteinen und Proteinkomplexen. Bevorzugt werden dabei Nitroxid-basierte Spinmarker verwendet.
Sie sind klein, haben keinen störenden Einfluss auf die Proteinstruktur und besitzen hervorragende spektroskopische Eigenschaften. "Das ideale Spinmarkierungsverfahren weist hohe Reaktionsraten bei hoher Selektivität auf", erklärt Prof. Dr. Malte Drescher, Professor für die Spektroskopie komplexer Systeme am Fachbereich Chemie der Universität Konstanz und mit Prof. Dr. Valentin Wittmann, einem Experten für organische Synthese, Hauptautor der Studie.
"Allerdings kann es schwierig werden, hohe Reaktivität bei gleichzeitig hoher Selektivität zu erreichen", so Drescher weiter. "Konventionelle Spinmarker, die beispielsweise auf Gadolinium(III) oder Trityl basieren, weisen außerdem entweder sehr große Bandbreiten bei niedrigen Modulationstiefen oder andererseits sehr schmale Bandbreiten auf, die sich für die Experimente, die wir durchführen möchten, nicht eignen."
Eine neue Studie von Drescher, Wittmann und ihren Arbeitsgruppen vom Fachbereich Chemie der Universität Konstanz, die im Journal ChemBioChem veröffentlicht wurde, stellt ein neuartiges Spinmarkierungsverfahren vor. Im Gegensatz zu den herkömmlichen Verfahren hebt es sich durch Nitroxid-basierte Spinmarker und genetisch codierte nichtkanonische Aminosäuren als Angriffspunkt für SDSL hervor.
"Durch die Nutzung von Nitroxiden erhalten wir ideale Bandbreiten und den Zugang zu dynamischen Informationen", erklärt dazu Anandi Kugele, Doktorandin an der Konstanzer Graduiertenschule Chemische Biologie und Erstautorin des Papers. Für die Vorstellung der darin beschriebenen neuen Forschungsergebnisse bei der diesjährigen Ausgabe der Rocky Mountain Conference on Magnetic Resonance in Denver, Colorado erhielt sie jüngst ein renommiertes Reisestipendium des National High Magnetic Field Laboratory in Tallahassee, Florida. "Herkömmliche Nitroxid-basierte Marker haben eine begrenzte Redox-Stabilität, was ihre Nutzung in der Zelle erschwert. Die Herausforderung für uns bestand darin, die Stabilität des Nitroxids zu erhöhen und Nitroxid-basierte Spinmarker so für zukünftige Routineeinsätze bei in vivo-Experimenten anzupassen."
Die Forscher entwickelten daher einen neuen Spinmarker, der mittels einer Diels-Alder-Cycloaddition mit inversem Elektronenbedarf (DAinv) an genetisch codierte nichtkanonische Aminosäuren in einem Protein bindet, eine Methode, die sich bereits in vielen Anwendungsbereichen sowohl in vitro als auch in vivo bewährt hat. Um das Nitroxid zu stabilisieren, nutzten die Wissenschaftler ferner durch Licht entfernbare Schutzgruppen, um Nitroxide zunächst zu schützen und sie je nach Bedarf freizugeben.
Der neue Spinmarker mit dem Namen photoaktivierbares Nitroxid für die Diels-Alder-Reaktion mit inversem Elektronenbedarf (DAinv) (photoactivatable nitroxide for DAinv reaction, kurz PaNDA), ist wasserlöslich, für die ESR-Spektroskopie geeignet und lässt sich effektiv entschützen, wie sowohl in vitro- als auch Lysat-Tests mit den beiden Modell-Proteinen grün fluoreszierendes Protein (GFP) und Escherichia coli Thioredoxin (TRX), das in fast allen bekannten Organismen vorkommt, vermuten lassen.
"Unsere nächste Aufgabe wird sein, an dem Verfahren zu feilen, mit dem wir den PaNDA Spinmarker in das Innere von Zellen transportieren. Außerdem wollen wir unter anderem testen, wie effizient die Markierung und die Entschützung in der Zelle ablaufen", resümiert Malte Drescher: "Unsere Forschungsergebnisse zeigen jedoch klar, dass das PaNDA-Label sich grundsätzlich für die ESR-Spektroskopie in herausfordernden Umgebungen eignet, insbesondere auch für die Anwendung im Inneren von Zellen. Unsere Tests mit E. coli-Lysat sind in dieser Hinsicht besonders vielversprechend. Langfristig könnte unser Verfahren neue Möglichkeiten zur Erforschung von Proteinen mittels ESR-Spektroskopie eröffnen."
Quelle: Universität Konstanz